CRISPR/Cas9-medieret genom-redigering inducerer exon at springe ved alternativ splejsning eller exon sletning

Vi har brugt for nylig CRISPR at forstyrre Kras-onkogenet i to uafhængige lunge adenocarcinoma cellelinjer , der stammer fra Kras G12D; p53 fl/fl (KP) mus . Vi isolerede to enkeltcellekloner, der hver bærer rammeskiftende sletninger i e .on 2 (fig., 1a og Ekstra fil 1: Figur S1a): KP1 bærer en 2-nt “-CG” sletning i G12D allel og et 1-nt “-C” sletning i det ellers wild-type (WT) Kras-allel, og KP2 bærer en 2-nt “-GG” sletning. Ingen af klonerne producerer Kras-protein i fuld længde, hvilket indikerer, at alle tre sletninger forstyrrer Kras-læsningsrammen.

Fig. 1

sgRNA rettet mod Kras inducerer exon springe i enkelt-celle kloner. en skematisk af en sgRNA rettet mod e .on 2 af musen Kras genet (sgKras)., Den røde pilespids angiver Cas9-spaltningsstedet. KP1-og KP2-cellelinjer blev transduceret med lentivirus, der koder for Cas9 og sgKras. To enkeltcelle kloner (KP1 klon og KP2 klon) havn frameshift sletninger. Sorte pile angiver positionerne for revers transkriptionspolymerasekædereaktion (RT-PCR) primere. G12d-kodonen er understreget. B normaliserede Kras læste tællinger fra RNA-sekventering (RNA-se.) analyse af KP-forældreceller (blå) og KP-kloner (rød). RNA-se.blev gjort to gange for KP2 klon og tre gange for de andre grupper. “+”betegner WT allel., c RNA-se.viser delvis e .on 2 springer i KP1 kloner. RNA-se.tal angiver læser spænder de angivne e .on junctions. To repræsentative biologiske replikater er vist. d RT-PCR analyse af Kras mRNA registrerer en e .on 2 sprunget bånd. De forventede båndstørrelser er 331 bp og 209 bp. M, molekylær markør. “*”betegner indels i PCR-produkter fra kloner. e Scatter plot viser 22 E .on begivenheder, der ændrer sig i både KP1 og KP2 kloner. Udelukkelse af Kras e .on 2 er den hyppigste begivenhed., Ψ, Procentdel Splejsning Index

Frameshift-mutationer i begyndelsen af exons er kendt for at udløse nonsense-medieret decay (NMD) , som eliminerer mrna med for tidlig afslutning-codons. Da vi analyserede mRNA-sekventeringsdata (RNA-se.), fandt vi imidlertid, at tilsyneladende Kras-mRNA-niveauer (dvs. total normaliseret mRNA-læser) kun blev reduceret med 19% i KP1-celler og 47% i KP2-celler sammenlignet med forældrenes KP-celler (fig. 1b). Begge kloner producerede færre e .on 2 læser, men normale niveauer af e .on 1 og 3 læser (Fig., 1c), hvilket antyder, at e .on 2 muligvis springes over i KP1-og KP2-klonerne. Faktisk opdagede vi e .on 1-3 junction læser, hvilket indikerer, at e .on 2 blev sprunget over (Fig. 1c og yderligere fil 1: Figur S1b). Beregning af forholdet mellem exon 2 læser og læser alt, fandt vi, at exon 2 er indeholdt i kun 64.0 ± 9,1% af Kras læser fra KP1-klon (Fig. 1c og tabel 1). Lignende e .on 2 skipping blev observeret i KP2-kloner (yderligere fil 1: Figur S1c)., Concordantly, reverse transkription af Kras mRNA efterfulgt af polymerase chain reaction (RT-PCR) givet to produkter: en svarede at intakt Kras komplementære DNA (cDNA) og den anden svarede til den exon 1-3 isoform (Fig. 1d). Exon 1-3 isoform bevarer en delvis Kras open reading frame, som kunne iværksætte en oversættelse fra en ATG codon i exon 3 (Supplerende fil 1: Figur S2) og producerer et meget stort Kras protein.,

Tabel 1 Genomisk læsion og mRNA splejsning resultaterne af en enkelt celle kloner

Redigering af Kras ikke fremkalde alternativ splejsning genome-wide. Vi identificerede 97 alternativt splejsede eksoner i KP1-celler og 177 begivenheder i KP2-celler. KP1 og KP2 kloner delte 22 kassette inklusion eller udelukkelse begivenheder, med udelukkelse af Kras e .on 2 er den største ændring i begge kloner (Fig. 1e og yderligere fil 1: tabel S3). Således inducerede redigering af Kras e .on 2 specifikt spring over Kras e .on 2., Bemærkelsesværdigt er det, der henviser til, at musen Kras G12D (GGU at GAU) udskrifter må ikke springe exon 2 i forældrenes KP celler, fandt vi, at ~15% af den menneskelige KRAS G12S (codon 12 GGU til AGU) afskrifter springe exon 2 i A549 menneskelige lunge cancer celle linje (Ekstra fil 1: Figur S1d). Vi var ude af stand til at forudsige den gevinst eller tab af exon splejse smagsforstærkere eller lyddæmpere , men vores data tyder på, at sekvenser i nærheden af Kras codon 12 fremme exon 2 inklusion i mus og mennesker Kras. E .on skipping induceret af CRISPR redigering var ikke begrænset til Kras eller mus KP celler., En nylig undersøgelse viste, at CRISPR redigering af FLOT1 exon 3 i HeLa celler kan forårsage springer af exon 3, exon 4, eller exons 3, 4 og 5 . Vi har også opdaget sjældne e .on springe når vi målrettet e .on 11 af LMNA i humane HCT116 celler (yderligere fil 1: Figur S3). Springe LMNA e .on 11 producerer en in-frame udskrift, der kunne oversættes til en neomorf protein.

til yderligere At udforske den idé, at exon skipping kunne producere en funktionel i-frame udskrift, spurgte vi, om CRISPR-medieret redigering af Ctnnb1 exon 3 kan fremkalde exon springe og forårsage en gain-of-function fænotype., Exon 3 af Ctnnb1 koder phosphoacceptor rester, der fremmer nedbrydningen af β-Catenin transskription faktor ; genetiske excision af Ctnnb1 exon 3—der er i rammen med exon 4—stabiliserer en constitutively aktiv β-Catenin, der ophobes i kernen . Vi har designet 11 sgRNAs, der er målrettet regioner, der findes langs Ctnnb1 exon 3 (Ctnnb1-sg1 til -sg11), transduced enkelte sgRNAs i KP celler, og brugt high-throughput-sekventering til at analysere omfanget af redigering på sgRNA target-site i hver linje (Fig. 2b axis-akse, yderligere fil 1: Figur S4 og yderligere fil 2: Tabel S4)., Tre sgrna ‘ er (sg6, sg9 og sg10) målrettede ctnnb1 ineffektivt. Otte af ctnnb1 sgRNAs (sg1 til sg5, sg7, sg8 og sg11) inducerede imidlertid indels på deres målsteder med frekvenser, der oversteg 20%. For eksempel genererede Ctnnb1-sg1 + T-indsættelser i omkring 65% af læsningerne (fig. 2c). I hver population, Der er målrettet mod en stærk ctnnb1 sgRNA, opdagede vi tre RT-PCR-produkter, der spænder over e .ons 2 til 5 (fig. 2d). Hovedproduktet svarer til det normalt splejsede transkript, der inkluderer e .on 3. De to andre produkter svarer til alternativt splejsede udskrifter: en, der springer over e 3ON 3 (dvs ., e 2-on 2-4 splejsning, Fig. 2e) og en, der springer både e andons 3 og 4 (dvs. e .on 2-5 splejsning, Fig. 2f). Ctnnb1 sgRNAs rettet mod enten DNA-strand induceret exon springe og Cas9 nuclease aktivitet, der var af afgørende betydning for exon skipping (Fig. 3a).

Fig. 2

Ctnnb1 sgRNAs rettet mod exon 3 inducerer exon at springe. en skematisk af ctnnb1 genet. In-frame e .on 3 koder for et hæmmende domæne: phosphorylerings aminosyrer 33, 37, 41 og 45 fremmer nedbrydning af β-Cateninproteinet., Tab af e .on 3 stabiliserer β-Catenin. Elleve sgRNAs blev designet til at målrette e .on 3: stærke sgRNAs i henholdsvis rød og svag sgRNAs i sort. sgRNAs at bruge “NGG” PAM er vist ovenfor exon 3 og dem, der bruger “CCN” PAM er vist nedenfor exon 3. B korrelation mellem e .on 3 skipping og sgRNA effektivitet. Genomiske indels blev målt ved dyb sekventering. KP-celler blev inficeret med lentivirus. E .on 3 Spring effektivitet er fra (d). Indels af sg11 blev ikke bestemt. sgrna ‘ er, der inducerer > 20% indels er markeret med rødt., c Fordeling af sg1 indels viser, at en T indsættelse (+T) på Cas9 hæmagglutininets kløvningssted, nukleotid 97 af exon 3 (rød pil) var de hyppigste. PAM sekvens er i blåt. d RT-PCR ved hjælp af primere, der spænder over e .ons 2 og 5, viser delvis e .on-Spring. M molekylær markør. sgGFP er en kontrol sgRNA. Exon 3 skipping bands blev kvantificeret ved hjælp af ImageQuant TL software og normaliseret til full length cDNA bands. sg4 viste synlige svage bånd, der ikke kunne kvantificeres., E, F topo kloning og Sanger sekventering bekræftet, at de to store lavere RT-PCR bånd i (c) er alternativ splejsning af e .on 2-4 og e .on 2-5, hhv. g Westernestern blot analyse af β-Catenin. Fuld længde β-Catenin er ~ 86 kD. β-Catenin uden e .on 3 (delta E .on 3) er ~77 kDa. Actin serveres som en belastning kontrol

Fig. 3

Cas9 nuclease aktivitet, der kræves for at springe en eller flere exons., en RT-PCR-analyse af Ctnnb1 mRNA i KP celler transduced med lentiviruses at indkode sgCtnnb1.2 og nuclease-defekt Cas9 (dCas9), dCas9-KRAB fusion, eller WT Cas9. RT-PCR blev udført under anvendelse af primere i e .ons 2 og 7 på transducerede KP-cellepopulationer efter puromycinudvælgelse og FACS-sortering. E .on længde og læsning ramme fase er vist. Kun e .on 2-4 splice-produktet bevarer en in-frame β-Catenin-kodningssekvens. b RT-PCR analyse af Ctnnb1 mRNA i KP celler transduced med lentiviruses at indkode Cas9 og sgGFP, sg3, eller sg5., “–”, ubehandlet

Western blot analyse viste, at cellepopulationer transduced med den stærke sgRNAs producere en mindre ~74 kD β-Catenin protein, der svarer i størrelse til den, der kan forventes fra exon 2-4 splejse produkt (Fig. 2g). Β-Cateninproteinet i fuld længde var ikke signifikant udtømt fire dage efter transduktion. Til at teste, om alternativ splejsning er afhængige af den fortsatte udtryk for Cas9 eller sgRNA i lentiviral vektorer, vi co-transfected Cas9 og Ctnnb1-sg1 eller en ikke-målrettet sgRNA kontrol., Syv dage efter transfektion, når transficeret Cas9 og guide RNA ‘ er skulle udtømmes, undersøgte vi β-Catenin lokalisering ved immunofluorescens. I mus fibroblastceller transficeret med en ikke-målretning kontrol sgRNA, β-Catenin lokaliseret til celle vejkryds (yderligere fil 1: Figur S5a). I modsætning hertil opdagede vi i mange celler, der blev transficeret med Ctnnb1-sg1, β-Catenin i kernen (yderligere fil 1: Figur S5a)., Disse resultater tyder på, at den kontinuerlige redigering er ikke påkrævet for exon at springe, og at exon 3 spring, der er fremkaldt af CRISPR-medieret redigering af Ctnnb1 exon 3 producerer en gain-of-function β-Catenin-isoformen.

vi analyserede yderligere transkripter, der spænder over e .oner 2 til 7 i cellepopulationer behandlet med ctnnb1-sg2,- sg3 og-sg5. Ud over den fulde længde isoform, vi har registreret fire udskrifter med exon 2 tilsyneladende splejset til hver downstream-exon (dvs exon 2-4, exon 2-5, exon 2-6, og exon 2-7; Fig. 3a, B)., Vi kan ikke forstå den mekanisme af dette tilsyneladende promiskuøs exon springe fremkaldt af Ctnnb1 exon 3 redigering, ej heller har vi været i stand til at korrelere promiskuøs exon at springe med specifikke mål websteder eller indel mutationer i exon 3. Ikke desto mindre isolerede vi en ctnnb1-sg3 redigeret klon, der antyder en potentiel mekanisme (yderligere fil 1: Figur S6a). Dette biallelic klon indeholder en 3-bp i-frame sletning på den ene allel, og en stor 832-bp deletion på den anden side; 832-bp deletion sikringer 5′ ende af intron 2 til 3′ – enden af exon 4 (Ekstra fil 1: Figur S6)., Vi opdagede to transkripter i disse celler: det korrekt splejsede transkript, der inkluderer sletningen af 3-bp og et transkript, der inkluderer intron 2 fusioneret til e .on 4 (Yderligere fil 1: Figur S6c og tabel 1). Disse resultater antyder, at tilsyneladende e .on-spring, der blev påvist i populationer af redigerede celler, kunne afspejle genomomlejringer, der fjerner e .oner.

to eksperimenter understøtter ideen om, at en enkelt sgRNA kan inducere store genomiske sletninger, der fjerner e .oner., For eksempel, vi isoleret 15 kloner fra mus 3T3 celler transient transfected med Cas9 og Ctnnb1-sg1, og fandt, at fire kloner (dvs kloner, 4, 5, 13 og 15) viste klart, exon at springe ved RT-PCR. Genomisk PCR afsløret genom-rearrangementer i tre af disse kloner: større deletioner (>500 bp) og mindre sletninger (~100 bp) i kloner 4 og 15, og store indførelser i kloner 13 og 15 (Ekstra fil 1: Figur S7)., Desuden, efter målretning exon 6 af p65/Forhold, vi isoleret en biallelic p65-klon (#15): en allel rummer en 1-nt+Et” indsættelse og den anden rummer en 2268-bp deletion, der fjerner exons 5, 6, og 7 (Ekstra fil 1: Figur S8a, c–e). I p65 klon # 15, vi opdaget den fuldt splejset udskrift og en e .on 4-8 splice produkt (yderligere fil 1: Figur S8c). Begge alleler indkode frameshifted udskrifter og begge p65 udskrifter er til stede på lavere niveauer end Figuret (yderligere fil 1: Figur S8b)., Vi har også isoleret en redigeret p65-klon (#31) homozygot for den samme + En indsættelse som i klon #15, men klon #31 ikke producerer alternativt splejset udskrifter. Således exon 4-8 splejset udskrift i klon #15 resultater fra sletning af exons 5, 6, og 7. Disse store e .on-sletningshændelser var uventede og ville blive savnet ved hjælp af typiske PCR-baserede screeningsassays.,

evnen til at forårsage en gain-of-function aktivitet ved at inducere exon spring eller exon excision foreslog, at CRISPR-mediterede redigering ved hjælp af en enkelt sgRNA kunne være en nyttig måde til delvist at redde funktion til en sygdom gen, der kræver lav-niveau redning. CRISPR-medieret homologe DNA-reparation har været anvendt til at korrigere for tidlig stop codon mutationer i Dmd-genet i en musemodel af DMD, og flere grupper har brugt CRISPR at slette Dmd exons og delvis genoprette Dmd udtryk . Vi designede fire sgRNA / Cas9 lentivirus, der er målrettet mod forskellige steder i E .on 23 af Dmd-genet (fig., 4a, B) og transduceret mus C2C12 myoblaster, en cellelinie, der i vid udstrækning anvendes som model for Duchenne muskeldystrofi (DMD). I c2c12-celler transduceret med Dmd sgrna ‘ er opdagede vi et RT-PCR-produkt, der svarer til det normale splejsningsprodukt indeholdende E .on 23. Sekventering af disse RT-PCR-produkter afslørede, at kun Dmd-sg2 effektivt redigerede Dmd e .on 23, hvilket fremgår af blandede sekvenstopper ud over sgRNA-målstedet (yderligere fil 1: Figur S9). I celler transduceret med Dmd-sg2 detekterede vi også et RT-PCR-produkt svarende til e .on 22 splejset til e .on 24 (fig. 4c, d)., Målretning mod e .on 23 med en sgRNA kan således være tilstrækkelig til at inducere delvis e .on-springning og producere en intakt dystrofin åben læseramme. DMD er et klassisk eksempel på en sygdom, hvor en lille mængde funktionel restaurering kan give betydelig klinisk fordel .

Fig. 4

En sgRNA rettet mod exon 23 af Dmd kan delvist genskabe i-frame dystrophin mRNA. en skematisk oversigt over sgRNA-målretning og-springning af mus Dmd e .on 23 og placering af primere til RT-PCR-analyse., Skipping af e .on 23 vil generere in-frame mRNA. b sgRNA mål sitesebsteder i Dmd e .on 23. c RT-PCR-analyse af c2c12 musemyoblastceller transduceret med lentivirus, der koder Cas9 og sgDmd1, 2, 3 eller 4. De forventede båndstørrelser er 353 bp og 140 bp. M molekylær markør. d-Sekvens analyse af de 140-bp cDNA band fra sgDmd2-behandlede celler bekræftet splejsning af exon 22 til exon 24

Skriv et svar

Din e-mailadresse vil ikke blive publiceret. Krævede felter er markeret med *